Ввиду того, что лишенные питания ткани организма очень быстро начинают претерпевать необратимые изменения (будь то смерть цело-го организма или искусственное удаление отдельных его частей), первым и обязательным условием микроскопической техники являются предупреждение и задержка посмертных изменений в тканях. Это достигается путем фиксации взятого для исследования материала.
Фиксация, как указывает сам термин, представляет со¬бой закрепление, сохранение в обрабатываемом кусочке органа того строения, которое он имел при жизни. В основе действия фиксаторов лежат физико-химические процессы и в первую очередь процесс коагуляции белков.

1. В/в струйно 8-10 ЕД простого инсулина, а затем в/в капельно со скоростью б-10 ЕД в час. Для этого готовят р-р, содержащий 50 ЕД инсулина в 500 мл ИНХ. Перед началом инфузии 50 мл данного р-ра пропускают через инфузи-онную систему и удаляют, чем достигается полная абсорбция инсулина поверхностью трубок. Р-р инсулина вводят со скоростью 60-100 мл в час, т.е. 6-ЮЕДинсулинавчас.таккакприготовленныйр-рсодержит 1 ЕДинсулинав 10 мл. При скорости 20 капель в минуту вливается 6 ЕД инсулина в час, при скорости 34 капли в минуту - 10 ЕД инсулина в час. Если уровень глюкозы в крови не снижается через 2 часа, то дозу инсулина увеличивают до 12-16 ЕД в час.
После достижения гликемии 11 ммоль/л в/в введение инсулина прекращают и назначают инсулин п/к по 4-6 ЕД каждые 3-4 часа под контролем гликемии. Уровень гликемии поддерживают в пределах 8-10 ммоль/л.
2. Более простой, но несколько менее эффективный метод в/м инъекций инсулина - 20 ЕД, лучше в дельтовидную мышцу плеча, затем - каждый час в/м 6-8 ЕД инсулина. Если при в/м инсулина в течение 2 ч гликемия не снижается - в/в капельное введение инсулина. После достижения уровня 11 ммоль/л - инсулин п/к по 4-6 ЕД каждые 3-4 часа.
3. Усиленная регидратация организма: в течение 1-го часа в/в капельно 1,5 л ИНХ или р-р Рингера; в течение 2-го часа - 1 л; в течение 3-го и 4-го часов - 0,5 л; в дальнейшем по 0,25-0,3 л каждый час в течение 8 часов. Инфузионная терапия проводится под контролем диуреза, который должен быть не менее 40-50 мл/ч. После достижения уровня гликемии 11,1-14 ммоль/л целесообразно вводить 5% р-р глюкозы для угнетения кетоацидоза и профилактики гипогликемии.
4. Восстановление электролитного баланса.
4.1. Борьба с гипокалиемией: в/в капельно 2% р-р калияхлорид, скорость 25 кап/мин (75мл/ч) в течение 4-5 ч, а затем по 25 мл/ч(скорость 8-10 кап/ мин). 4.2. Борьба с гипофосфатемией: в/в капельно калия фосфат со скоростью 10 ммоль/ч. 4.3. Борьба с гипомагниемией: в/в введение капельно 5-10% магния сульфата по 6-8 мл в течение 3 ч под контролем АД.
5. Восстановление кислотно-основного состояния. Если РН крови ниже 7 - в/в 2,5% р-р натрия гидрокарбоната со скоростью 340 мл/ч, за сутки около 400-600 мл.

Приготовление раствора гематоксилина
Добавить 2 г гематоксилина в 100 мл 96 % спирта, к полученному раствору добавить дистиллированную воду в количестве 100 мл, калийных квасцов 3 г, ледяной уксусной кислоты 10 мл. Прибавлять эти вещества нужно в строгой последовательности. Калийные квасцы должны быть химически чистые. Для того, чтобы произошло полное окисление гематоксилина (то есть для того, чтобы образовался гематоксилин) приготовленный раствор должен не менее 15 дней находиться в тёмном месте при доступе воздуха (для этой цели банка с раствором должна быть закрыта бумажным колпаком или сложенной в 3-4 слоя марлей). О созревании раствора можно судить по его цвету: светло-красный становится тёмно-красным через 15 дней. Раствор необходимо время от времени взбалтывать – это ускорит его созревание. Раствор очень долго сохраняется в банках с притертой пробкой.

Особенности строения и функционирования различных отделов дыхательной системы у детей во многом определяют структуру бронхолёгочных заболеваний, характер течения и исход. К ним относятся:
1. Податливость грудной клетки из-за мягкости рёбер обусловливает склонность к парадоксальному дыханию.
2. «Экспираторное» строение грудной клетки, меньшее развитие дыхательной мускулатуры и высокое стояние диафрагмы ограничивают возможность увеличивать дыхательный объём.
3. Узкие (до 1 мм) и короткие носовые ходы, хорошее развитие сосудов СО носа резко затрудняют сосание при рините, ухудшают механическое очищение и согревание воздуха при прохождении через них.
4. Хрящи гортани нежные и податливые, их слизистая оболочка богата кровеносными и лимфатическими сосудами, клетчатка рыхлая — в связи с этим высокая частота возникновения и тяжесть течения ларингитов, нередко со стенозом гортани.
5. Трахея короткая, воронкообразной формы, слизистая оболочка богато васкуляризирована, нежная — приводит к более частому вовлечению в процесс при ларингитах и бронхитах и самостоятельному развитию изолированных трахеитов.

1. Сполоснутый срез (замораживающий микротом) в водопровод-ной воде перенести в чашку с раствором гематоксилина на несколько минут (10-15 мин.)
2. Хорошо сполоснуть срез в водопроводной воде.
3. Дифференцировать в солянокислом спирте (1-% соляной кисло-ты в 70-% спирте), при этом срез из тёмно-фиолетового, фиолетово-синего, чёрно-синего становится коричневато-фиолетовым или коричневато-красным (5-6 капель соляной кислоты на 100 мл 70-% спирта).
4. Сполоснуть срез большим количеством водопроводной воды не-сколько раз до посинения.
5. Перенести срез в слабый раствор нашатырного спирта – аммиака (в дистиллированную воду накапать 3 капли нашатырного спирта; в такой щелочной среде срезы становятся синими (10мин.)).
6. Хорошо сполоснуть срез в дистиллированной воде несколько раз (в течение 15 минут).
7. Окрасить срез эозином (3-5 мин.)

1. В/в 0,3-0,5 мл 0,1% р-ра адреналина в 10-20 мл ИНХ. При отсутсвии эффекта через 15 мин. в/в капельно 0,5 мл. 0,1% р-ра адреналина в 250 мл ИНХ или 0,3-0,5 мл 0,1% адреналина в подъязычную область. Можно в/в капельно изадрин 0,1 -0,5мкг/кг в минуту. 2. В/в струйно 200-400 мг гидрокортизона гемисукцината или фосфата или 120 мг преднизолона с последующим переходом на в/в капельное вливание той же дозы в 250 мл 5% р-ра глюкозы 40 кап/мин. При отсутствии эффекта - в/в струйно 90-120 мг преднизолона.
3. В/в 0,5-1 мл 0,1% атропина сульфата а 10 мл ИНХ. 4. В/в медленно (3-5 мин) 10 мл 2,4% эуфиллина в 10-20 мл ИНХ. 5. Антигистаминные средства (супрастин, тавегил, димедрол) в/в по 2-3 мл в 10 мл ИКХ. 6. При отсутствии эффекта от перечисленных мероприятий фторотановый наркоз и при отсутствии эффекта от него ИВЛ. 7. Прямой массаж легких ручным способом (вдох осуществляется мешком наркозного аппарата, выдох - сдавленном грудной клетки руками) 8. В/в 200-300 мл 4% гидрокарбонат натрия. 9. П/к гепарин 20000-30000 ЕД/сут (распределив на 4 инъекции). 10. Для борьбы с отеком мозга в/в 80-160 мглазикса, 20-Ю мл 40% глюкозы.

Современная гистология располагает большим арсеналом средств для изучения биологических структур на всех уровнях их организации – клеточном, тканевом, органном. Основными объектами исследования являются гистологические препараты или их фотографии, классическим методом – микроскопирование.
Световая микроскопия наиболее распространенный способ изучения гистологических структур. Современные биологические микроскопы дают максимальное (до 2500 раз) увеличение (произведение увеличения объектива на увеличение окуляра).

Ориентировочная схема неотложной терапии больных:
1 стадия - стадия резиствипюсти к симпатомиметнкам.
1. Отмена адреностимуляторов (симпатомиметиков). 2. Глюкокортикоид-ная терапия: в/в струйно, капельно, непрерывно или через каждые Зч, суточная доза гидрокортизона • до 1500 мг, предниэолона • до 300-400 мг. 3. В/в струй-i но или капельно эуффилин до 1,5-2 г в сутки. 4. Инфузионная терапия : ИНХ, 5% р-р глюкозы, р-р Рингера -до 2-2,5 л/сут. 5. В/в капельно 4% гидрокарбоната натрия 200 мл . 6. В/в 10% р-р йодистого натрия до 30-60 мл/сут или 3% р-ра его внутрь. 7. Непрерывная инсуффляция кислородно-воздушной смесью (30-40%). 8. Сердечные гликозиды - по показаниям и после тщательной | оценки целесообразности. 9. В/в 20-40 мг лаэикса. 10, Кровопускание: при • сочетании повышенного ЦВД (до 150 мм.водн.ст. и выше) с гемоконцентрацией (гематокрит 50% и более). 11. В/в 0,25% р-р дроперидола 1-2 мл - при | наличии возбуждения больных. 12. Фторотановый наркозе целью бронходилатации. 13. Реополиглюкин 400-600 мл/сут., гепарин 25000-30000 ЕД/сут. 14. При недостаточной эффективности вышеуказанной терапии • проведение лечебной бронхоскопии. 15. Применение антибиотиков (исключая пенициллин и его аналоги) с учетом их переносимости в прошлом - если статус спровоцирован инфекцией.

По механизму развития все анемии делятся на пять больших групп.
1. Постгеморрагические анемии: острые и хронические.
2. Анемии вследствие недостаточности эритропоэза: наследственные, врождённые и приобретённые (идиопатические, аутоиммунные, транзиторные апластические анемии).
3. Дефицитные анемии (дефицит гемопоэтических факторов): железодефицитные; белководефицитные; витаминодефицитные (В 12, фолиевая кислота, С, Е и др.); дефицит микроэлементов (медь, цинк, магний); смешанные.
4. Гемолитические анемии (Г А ) : неиммунные ГА — врождённые и наследственные (мембранопатии: микросфероцитоз, стоматоцитоз, эллиптоцитоз; ферментопатии: дефицит глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы и др.; гемоглобинопатии: серповидноклеточная ГА, талассемии) и приобретённые (Е-витаминодефицитная анемия новорождённых; токсические; болезнь Маркиафавы—Миккели; ДВС-синдром; механические повреждения эритроцитов), а также иммунные ГА — изоиммунные (гемолитическая болезнь новорождённых, посттрансфузионная, посталлотрансплантационная); трансиммунные (передача антител от матери с аутоиммунной ГА; гетероиммунные (медикаментозные, бактериальные, вирусные и др.) и аутоиммунные ГА.
5. Анемии смешанного генеза: при острой инфекции, сепсисе; при ожогах; при опухолях и лейкозах и при эндокринопатиях.
Анемии в зависимости от уровня гемоглобина и/или эритроцитов делят на 3 степени тяжести: I (лёгкой степени тяжести) — гемоглобин от 120 г/л до 90 г/л и эритроциты 3— 3 , 5 х Ю 12/л; I I (средней степени тяжести) — гемоглобин 90— 70 г/л, эритроциты 3,0—2 ,5 х 1 0 12/л; I I I (тяжёлой степени) — гемоглобин менее 70 г/л, эритроциты менее 2,5х 1012/л.

Наклеивают парафиновые срезы на чистые обезжиренные предметные стекла, смазанные белком с глицерином. Для приготовления последнего свежий яичный белок взбивают шпателем и фильтруют через смоченный дистиллированной водой бумажный фильтр. К профильтрованному белку добавляют равный объем глицерина, смешивают и кладут для предупреждения загнивания 2-3 кусочка тимола величиной с зернышко пшеницы. В закрытой склянке белок с глицерином хранится длительное время. Маленькую капельку белка с глицерином наносят на предметное стекло и пальцем размазывают тонким слоем по стеклу. Если срезы были помещены в чашку с дистиллированной водой, белок на стекле коагулируют, подержав стекло над спиртовкой белком вверх. Затем расправленный срез при помощи кисточки вылавливают из воды и переносят на стекло. Осторожно наклоняя предметное стекло, дают воде стечь и затем на 12-24 ч стекло переносят в термостат с температурой 37°С.

Раннее искусственное вскармливание с введением чужеродного белка (коровьего) может привести к развитию пищевой аллергии у детей, особенно относящихся к группе риска по аллергическим заболеваниям.
К аллергическим причинам синдрома мальабсорбции относят аллергический энтероколит и энтеропатию.
Этиология. Коровье молоко — один из самых ранних ал лергенов, значимых для ребёнка на первом году жизни. Оно содержит более 20 белков-антигенов, наиболее аллергенным является (3-лактоглобулин.
Патогенез. При пищевой аллергии наблюдаются в основном три типа истинных аллергических реакций: немедленные аллергические реакции с участием реагинов, иммунокомплексные и замедленные Т-клеточные.
Пищевая аллергия протекает преимущественно по типу немедленных аллергических реакций с участием реагинов, входящих в состав IgE и IgG4, которые не несут функции, присущей IgA ; в просвете кишечника они деградируют под влиянием ферментов и, связываясь с тучными клетками в слизистой оболочке, вызывают их сенсибилизацию. Эти тучные клетки за счёт антител класса IgE и некоторых субклассов IgG взаимодействуют с соответствующими аллергенами пищи, повторно проникающими в слизистую кишечника и выделяют медиаторы аллергической реакции. В механизме развития пищевой аллергии важную роль играют и аллергические реакции иммунокомплексного и замедленного типов.

Блок фиксируют в объектодержателе так, чтобы длинная ось блока располагалась вдоль длинной оси микротома, а поверхность блока горизонтальной. Очень важна правильная установка ножа. Оптимальным углом наклона ножа считается такой, когда плоскость фасетки совпадает с плоскостью среза. На практике угол наклона ножа обычно несколько больше оптимального. Если угол наклона ножа слишком велик, материал будет крошиться, если слишком мал, нож будет 1-2 раза проскальзывать над блоком, а потом срезать толстый срез.
Парафиновые блоки режут прямым ножом, целлоидиновые – плосковогнутым. При резке парафиновых блоков нож устанавливают перпендикулярно оси микротома или слегка под углом. И последнем случае нельзя получить серийных срезов, но зато очень плотные и трудно режущиеся объекты режутся легче. При резке целлоидиновых срезов нож устанавливают под углом.
Когда нож установлен, к нему осторожно подводят блокодержатель с блоком и одновременно придвигают нож к блоку. Подачу объектодержателя осуществляют с помощью кремальеры, расположенной в основании объектодержателя, либо рукой, толкая санки объектодержателя вдоль наклонных рельсов. Когда блок и нож сближены, проверяют горизонтальность верхней поверхности блока, которая не должна доходить до лезвия ножа на 0,5-1 мм. После этого устанавливают микрометрическую шкалу на получение толстых срезов (30 мкм) и движением салазок ножа начинают подавать блок вверх до тех пор, пока не начинают получаться первые полные срезы, затем микрометрическую шкалу следует установить на необходимую толщину срезов. Парафиновые срезы диаметром 7-10 мкм.
При очень хорошо залитом материале и хорошо наточенном ноже можно получить срезы толщиной 3-5 мкм. Толщина целлоидиновых срезов обычно составляет 12-15 мкм.